细胞活力测定的方法有哪些
鉴定培养细胞活力有多种方法,fda是主要方法之一,其原理是什么_百度知 ...
FDA染色法：是测定原生质体活性的一种方法，即荧光素双醋酸酯染色，FDA本身无荧光，进入原生质体后便产生荧光素，它不能自由进入原生质体膜，因此有活力的细胞便产生荧光。原生质分离，酶，纤维素酶，离析酶。步骤：叶片表面消毒→去除表皮→叶碎片漂浮在含有酶和渗透压稳定剂的溶液中→培育→原生质体沉还有呢？
试剂与准备 首先，为实验提供基础，我们需要以下关键试剂：含血清培养基，为细胞生长提供营养 MTT溶液（50 mg PBS溶液避光保存），用于细胞活力检测 0.25%胰酶，用于细胞培养处理 PBS缓冲液，保证实验过程的pH稳定 4%多聚甲醛，用于细胞固定 重铬酸钾酸洗液，用于后续步骤的处理 PC12等我继续说。
FDA染色法：是测定原生质体活性的一种方法，即荧光素双醋酸酯染色，FDA本身无荧光，进入原生质体后便产生荧光素，它不能自由进入原生质体膜，因此有活力的细胞便产生荧光。原生质分离，酶，纤维素酶，离析酶。步骤：叶片表面消毒→去除表皮→叶碎片漂浮在含有酶和渗透压稳定剂的溶液中→培育→原生质体沉还有呢？
试剂与准备 首先，为实验提供基础，我们需要以下关键试剂：含血清培养基，为细胞生长提供营养 MTT溶液（50 mg PBS溶液避光保存），用于细胞活力检测 0.25%胰酶，用于细胞培养处理 PBS缓冲液，保证实验过程的pH稳定 4%多聚甲醛，用于细胞固定 重铬酸钾酸洗液，用于后续步骤的处理 PC12等我继续说。
活力测定可以和细胞计数合起来进行，但要考虑到染液对原细胞悬液的加倍稀释作用。#160;三、MTT法测细胞相对数和相对活力 活细胞中的琥珀酸脱氢酶可使MTT分解产生兰色结晶状甲赞颗粒积于细胞内和细胞周围。其量与细胞数呈正比，也与细胞活力呈正比。#160;1. 细胞悬液以1 000 rpm离有帮助请点赞。
淋巴细胞活力是指活淋巴细胞占总淋巴细胞的百分比。活力的测定通常使用的方法是台盼蓝染色法。该染料是一种阴离子型染料，不能透过活细胞细胞膜，故活细胞不染色，死亡细胞呈蓝色，观察计数200个细胞，计算不着色细胞的百分率及代表细胞的活力。
如何用TTC法测定细胞活力(具体步骤)? -
1.浸泡将待测种子在30 ～35 ℃温水中浸种（大麦、小麦6 小时，玉米5 小时左右），以增强种胚的呼吸作用。2.显色取吸胀的种子200 粒，用刀片沿种子胚的中心线纵切为两半，将其中的一半置于2 只培养皿中，每皿100 个半粒，加入适量的0.5 TTC 溶液，以覆盖种子为度。然后置于30 后面会介绍。
spss软件分析细胞活力：单因素方差。1、打开SPSS软件，左下角选择变量视图，设置变量。2、在组别变量中对值进行具体设置，给实验数据设置标签。3、数据视图及数据输入。变量视图设置完成后，点击左下角数据视图，进行数据输入。4、数据输入完成后，选择工具栏里的分析选项，在该选项菜单中选择比较均值，在是什么。
MTT法测定细胞活力,在加入DMSO后可以保存一周再检测吗? -
这个不行的，细胞在经药物处理后，再加入MTT，就与细胞发生了反应，一般来说，加入MTT后，要在尽量短的时间内测定出结果才可以的，不然结果就不准确了，曾做过实验对比，放置几天后再测定光吸收值，与首次测定的光吸收值的数据相差很大，已不能准确反应实验情况，建议不要等七次处理完后一起测定有帮助请点赞。
纯化的原生质体需经活力测定后方可用于培养。活力测定的方法有：1、根据形态待征判断其活力：原生质体呈绿色（若来源于叶片）及圆而鼓者为活原生质体。2、荧光染料活体染色法：荧光素染料可自由透过细胞膜，在细胞内被酯酶水解为荧光素，后者不能自由透过细胞膜而滞留于细胞内，在荧光显微镜下根据荧光强度希望你能满意。
检测细胞增殖的方法有哪些 -
目前主要有两种用于检测细胞增殖能力的方法。一种是直接的方法，通过直接测定进行分裂的细胞数来评价细胞的增殖能力。另一种是间接的方法，即细胞活力（cell viability）检测方法，通过检测样品中健康细胞的数目来评价细胞的增殖能力。显然，细胞活力检测法并不能最终证明检测样品中的细胞是否在增殖。如细胞在后面会介绍。
【答案】：C 细胞损伤或死亡时，台盼蓝可穿透变性的细胞膜，与解体的DNA结合，使其着色，而活细胞能阻止染料进入细胞内。因此可以检测淋巴细胞的活性。