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淀粉酶活力的测定

2024-08-14 19:07:34 来源:网络

淀粉酶活力的测定

淀粉酶活力测定 -
3、酶活力的测定:取6支干净的具塞刻度试管,编号,按表进行操作。4、结果计算:淀粉酶活力=C×VT/(W×Vs×T)(mg/g/min)。
本实验选取萌发的禾谷类种子为材料,通过对其所含两种淀粉酶活力的测定来研究酶活力测定的方法。二、实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶,分别是a淀粉酶和B淀粉酶,B淀粉酶不耐热,在高温下易钝化,而a淀粉不耐酸,在pH3.6下则发生钝化。本实验的设计利用B淀粉酶不耐热的特性,在高温下(70C°)下有帮助请点赞。

淀粉酶活力的测定

淀粉酶的测定方法有哪些 -
1、取试管1支,加20毫升2%淀粉,混匀,在30℃水浴中,使管内温度达到30℃。2、将淀粉酶0.5ml加到30℃的淀粉液中,混匀,在30℃水浴中保温,自加入记时,经5 分钟后取反应液1毫升,加入盛有5毫升稀碘液的试管中。混匀,目测比色,每隔一定时间重复测定,直至呈色与标准比色颜色相同为止,记录说完了。
-淀粉酶活力测定α-淀粉酶活力测定Yoo改良法:两份各5 ml 0.5%淀粉(用pH6.0 Na2HPO4-柠檬酸缓冲液配制) 分别标记为A、B,放入40℃恒温水浴中保温10分钟,A中加0.5 ml酶液,B中加0.5 ml dH2O,反应5 min后,各加5 ml 0.1 mol/L H2SO4终止反应。分别从A、B取0.5 ml反应液加入到于5m希望你能满意。
淀粉酶活力测定实验中,为什么123号试管的加液顺序不一样?1 -
淀粉酶活力测定实验中,123号试管的加液顺序不一样的原因是发生反应有先后之分。3个试管中特性不同,发生反应时间也有快慢。淀粉酶是水解淀粉和糖原的酶类总称,淀粉酶活性测定实验是将提取液加热到70℃维持15分钟以钝化贝塔淀粉酶,测定阿尔法淀粉酶的活性。
钝化α–淀粉酶,以求出β–淀粉酶的活性。淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖,可用3,5–二硝基水杨酸试剂测定。由于麦芽糖能将后者还原生成3–氨基–5–硝基水杨酸的显色基团,在一定范围内其颜色的深浅与糖的浓度成正比,故可求出麦芽糖的含量。以单位重量样品在一定时间内生成的麦芽糖的量表示酶活力。
α-淀粉酶活力的测定实验失败的原因 -
温度。大多数阿尔法淀粉酶都是蛋白质,温度会蛋白质的空间结构,阿尔法淀粉酶的最适温度为37摄氏度,如果温度高于或低于最适温度,酶活性都会降低,导致测定实验失败。阿尔法淀粉酶,别名为液化型淀粉酶、液化酶等,黄褐色固体粉末或黄褐色至深褐色液体,含水量百分之5到8,溶于水,不溶于乙醇或乙醚。
3、酶活力的测定:取6支具塞刻度试管编号,按表(教材P152)进行操作。摇匀,置沸水浴中5min,取出后冷却,加蒸馏水至20m1,摇匀,在540nm波长下比色。4、结果计算:淀粉酶活力=CxVT/WxVsxt)(mg/g/min)C为从标准曲线上查得的麦芽糖含量(mg);VT为淀粉酶原液总体积(m1);Vs为反应所用淀粉酶原液是什么。
淀粉酶活力测定实验中有哪些影响因素? -
不同的酶,Km值不同。同一个酶有几种底物时,则对每一种底物各有一特定的Km值,其中Km值最小的底物一般称为该酶的最适底物或天然底物。x0d\x0a综上所述,根据酶的特性及定量原理,测定酶活力时,必须注意以下几点:x0d\x0a(1)酶促反应过程中,只有最初一段时间内反应速度与酶浓度成是什么。
谷物种子萌发时淀粉酶活力的测定几乎所有植物中都存在淀粉酶,尤其是萌发的禾谷类种子,淀粉酶活性最强。主要是α-淀粉酶和β-淀粉酶。种子萌发时,淀粉酶活性随萌发时间迅速增加,将淀粉分解成小分子糖类,供幼苗生长。α-淀粉酶随机水解淀粉的α-1,4-糖苷键,作为淀粉分解的起始酶而起主要作用;其水解说完了。