植物DNA提取中怎样检测提取到DNA质量
如何判断已提取的植物DNA的质量好坏 -
直接跑胶~~~分光光度计测~~~跑个pcr，cycle不要太高，那别人的模板比一下~~~。不过最方便的就是分光光度计。
可以通过测定它的浓度和OD值，还有办法就是点样和marker比较亮度。因为marker是知道浓度的。
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可以通过测定它的浓度和OD值，还有办法就是点样和marker比较亮度。因为marker是知道浓度的。
第一种方法是测量260/280的比例，判断是否有蛋白质的污染。在260nm和280nm处测定DNA溶液的光吸收，A260与A280之比应在1.75-1.80之间。低于此值表明制备物中残留蛋白质成分较高或含有酚，高于此值表明有RNA的残留。第二种方法是凝胶电泳分析，看有无断裂降解。影响DNA提取质量的因素：如果实验开始植好了吧！
1．提取DNA （1）提取DNA所用的提取液、吸头、离心管等需要在高压灭菌锅中121℃（约1.1 kg/cm2）高压灭菌20 min。（2）用液氮将50mg 幼嫩叶片研磨成细粉，置于1.5ml 离心管中加入预热至65℃的600μl 的CTAB提取液，轻摇混匀。（3）65℃水浴1小时，其间轻摇混匀。（4）12000rpm离心10min，..
植物组织中DNA用什么方法提取与测定? -
1． 称取2～5g 新鲜菠菜幼嫩组织或小麦黄花苗等植物材料，用自来水、蒸馏水先后冲洗叶面，用滤纸吸干水分备用。叶片称重后剪成1cm 长，置研钵中，经液氮冷冻后研磨成粉末。待液氮蒸发完后，加入15mL 预热（60～65℃）的CTAB 提取缓冲液，转入一磨口锥形瓶中，置于65℃水浴保温，0.5~1h，不时地轻轻说完了。
分离提取植物DNA的方法很多，本实验采用CTAB法提取DNA并通过紫外吸收法和电泳鉴定。二、操作方法(1) 取200mg样品(在液氮中研磨成粉末状)放入1.5mL离心管中，加入600μL DNA提取液，颠倒混匀5-6次。65℃保温35分钟以上，其间颠倒混匀一次。2)再加等体积的氯仿异戊醇(24:1)溶液轻轻摇晃30秒，在4℃下10000rpm/等会说。
植物DNA提取 -
1植物组织提取基因组DNA 一、材料幼嫩叶子。二、设备移液器，冷冻高速离心机，台式高速离心机，水浴锅，陶瓷研钵，50ml离心管（有盖）及5ml和1.5ml离心管，弯成钩状的小玻棒。三、试剂1、提取缓冲液Ⅰ：100mmol/L Tris·Cl, pH8.0, 20mmol/L EDTA, 500mmol/L NaCl, 1.5% SDS。2、提取等会说。
植物DNA提取方法方法一：1.取两片幼嫩新鲜叶片，置于预冷的研钵中，倒入适量液氮，迅速研磨成粉末状，随后加入3ml预热的2%CTAB抽提缓冲液和50ul抗氧化剂2-巯基乙醇，继续研磨成略有流动性的糊状或粥状，转入1.5ml的离心管中，于65℃水浴锅中保温约60min。2.待混合物冷却至室温后加入等600ul的CI（..
sds法提取植物dna中如果含有rna残留如何鉴定 -
1、提取的DNA溶液呈现黄色或橘红色，这是RNA残留的迹象。2、将提取的DNA进行电泳分析，观察电泳条带是否含有拖尾或模糊不清的现象。3、将提取的DNA进行紫外吸光度分析，观察A260、A280的比值。正常比值应该在1.8至2.0之间，如果比值偏低，则存在RNA残留。4、设计特定的引物，对提取的DNA进行PCR扩增，..
首先是植物有细胞壁的，我们还要用纤维素酶果胶酶去除细胞壁，其次是细胞内的细胞器很多我们做实验的时候是要细胞核内的染色体的DNA，所以在书上所说的步骤中我们还要过滤掉杂质（各种细胞器，蛋白质）这也是我们为什么要用成熟的红细胞提取DNA的原因，它高度分化，没有任何细胞器放入蒸馏水中后，由于细胞等我继续说。