MTT浓度折算
mtt算出抑制率,怎么选择浓度 -
有人总结了一个大概的公式，根据临床用药量来推算体外浓度是不太可靠的；ml)=60×临床用药剂量（，还是要做一做MTT，再最后确定浓度，
需要样品的量为100X(10^-6) mol/L * 1X(10^-3) L * MW g/mol
有人总结了一个大概的公式，根据临床用药量来推算体外浓度是不太可靠的；ml)=60×临床用药剂量（，还是要做一做MTT，再最后确定浓度，
需要样品的量为100X(10^-6) mol/L * 1X(10^-3) L * MW g/mol
mtt和western blot加药浓度是以细胞量计算做western blot需要多少细胞并不是一个固定的值这主要取决于蛋白的表达量，没有一个绝对的量如果做细胞总蛋白的话，至少10的4次方细胞每微升蛋白裂解液。一般可以每泳道取10的5次方细胞每微升蛋白裂解液（即10微升上样）根据这个数量级，结合western blot结果后面会介绍。
做MTT时，用96-well plates的话，一般每孔分5000个或10000个细胞，加100ul培养基，培养24h后，加入不同浓度的药物，每个浓度的药物一般设3-6个平行样。给药24或者72h后，加入MTT，使其终浓度为5%（比如5mg/ml的MTT加10ul）。再培养4h.然后吸出培养基，每孔加DMSO 150ul，用酶标仪测570nm的OD值说完了。
做MTT时,96孔培养板细胞浓度该是多少? -
关键是接种于每孔的细胞数就大致处于同一水平.比如我做MTT,起初用的细胞浓度为5000/ml,每孔100ul,培养3天观察，发现细胞数太少，各孔OD值反面难于比较.后来我换用10000/ml,结果就很好.当然细胞数也不能太多，这其实取决于你细胞的生长速度，生长快的细胞，可接种浓度低点.这主要是使细胞增殖率不致受有帮助请点赞。
多设几个浓度，先把浓度范围调大点，从中选合适的浓度，再把浓度调细点。
做MTT时,96孔培养板细胞浓度该是多少 -
悬浮细胞通常是4x10 4/ml ，帖壁细胞通常是5x10 4/ml 产生差别的原因有多种。1.在加细胞时，细胞沉淀下来，导致两孔细胞数不同。我们通常用磁力转子对细胞缓慢搅拌，时刻保持细胞处于悬浮状态。2.96孔板在培养箱中，由于湿度不够，而培养箱由于具有一定的温度，使得边缘的孔水分蒸发较快，导致培养基到此结束了？。
MTT是测试细胞数量和活度的方法。我觉得你可能在控制细胞数量的时候没有做到等同，因为很多操作上的因素会影响。比如，你操作时间太长会让大量的细胞贴壁，而你还认为细胞密度是一样的，就会使后面加到的样品细胞数量减少。所以我建议你看看细胞数量上的问题。当然，也不排除染菌了。其实相当于变相增加细胞还有呢？
请问做mtt法时,怎么对药物进行梯度稀释? -
一般是两倍梯度稀释，第一孔加200ul含有药物的培养液，第二孔加100ul培养液，第三孔加100ul培养液。。。从第一孔取100ul加到第二孔混匀，从第二孔取100ul加到第三孔混匀，第三孔取100ul扔掉。。。能明白吗？如果不明白欢迎继续追问，
加完DMSO之后MTT并不会很快溶解，需要震荡加速溶解，时间不定。那你需要确定药物的浓度是否过大、药物溶解性、是否可能与MTT有反应等潜在的原因.